Laboratóriumi állatok, felhasználásuk céljai és módszerei a virológiában. Laboratóriumi állatok Kiegészítő anyagokból

Publikációk a témában:

1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

1. Makarova M.N., Rybakova A.V., Gushchin Ya.A., Shedko V.V., Muzhikyan A.A., Makarov V.G. Az emésztőrendszer anatómiai és élettani jellemzői emberekben és laboratóriumi állatokban // Nemzetközi Állatorvosi Közlöny. -2016, 1. sz. –S. 82-104.
2. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Görények mint laboratóriumi állatok // International Veterinary Bulletin. -2016, 2. sz. –S. 103-116.
3. Rybakova A.V., Kovaleva M.A., Kalatanova A.V., Vanatiev G.V., Makarova M.N. Törpemalac mint a preklinikai kutatás tárgya // International Veterinary Bulletin. -2016, 3. sz. –S. 168-176.
4. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. A görények mint laboratóriumi állatok // A IV. Nemzetközi Állatgyógyászati ​​Farmakológusok és Toxikológusok Kongresszusának anyagai „Hatékony és biztonságos gyógyszerek az állatgyógyászatban”. Szentpétervár, 2016. –S. 46-47.
5. Goryacheva M.A., Gushchin Ya.A., Kovaleva M.A., Makarova M.N. A lidokain-hidroklorid és a kálium-klorid felhasználásának lehetősége laboratóriumi nyulak eutanáziájára // Az Állatorvos-farmakológusok és Toxikológusok IV. Nemzetközi Kongresszusának „Hatékony és biztonságos gyógyszerek az állatgyógyászatban” anyagai. Szentpétervár, 2016. –S. 55-56.
6. Rybakova A.V., Makarova M.N. A törpe sertések megfelelő karbantartása és gondozása a preklinikai kutatáshoz // A IV. Nemzetközi Állatgyógyászati ​​Farmakológusok és Toxikológusok Kongresszusának anyagai „Hatékony és biztonságos gyógyszerek az állatgyógyászatban”. Szentpétervár, 2016. –S. 46-47.
7. Susoev A.I., Avdeeva O.I., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Orálisan diszpergálható gyógyszerek preklinikai vizsgálatának tapasztalatai hörcsögökön // „A gyógyszerek biztonságosságának értékelésének jelenlegi problémái” című VII. tudományos és gyakorlati konferencia absztraktjai. A Sechenovskiy Vestnik folyóirat elektronikus melléklete. -2016, 2. szám (24). -VAL VEL. 34-35.
8. Kalatanova A.V., Avdeeva O.I., Makarova M.N., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Vanatiev G.V., Makarov V.G., Karlina M.V., Pozharitskaya O.N. A hörcsögpofa tasakok használata a szájüregben diszpergált gyógyszerek preklinikai vizsgálatai során // Gyógyszertár. -2016, 7. sz. -VAL VEL. 50-55.
9. Rybakova A.V., Makarova M.N., Makarov V.G. A nyulak felhasználása a preklinikai kutatásban // Nemzetközi Állatorvosi Közlöny. -2016, 4. sz. –S. 102-106.
10. Gaidai E.A., Makarova M.N. A degusok használata laboratóriumi állatokként // Nemzetközi Állatorvosi Közlöny. -2017, 1. sz. –S. 57-66.
11. Rybakova A.V., Makarova M.N. A törpe sertések kísérleti viváriumokban tartásának állattenyésztési jellemzői // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, 1. sz. –S. 66-74.
12. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V., Zozulya O.K. Laboratóriumi állatok takarmányozása. Alap diéták. Üzenet 1. // Nemzetközi Állatorvosi Értesítő. -2017, 2. sz. –S. 91-105.
13. Makarova M.N., Makarov V.G., Shekunova E.V. Állatfajok kiválasztása a farmakológiai anyagok neurotoxicitásának értékeléséhez // International Veterinary Journal. -2017, 2. sz. –S. 106-113.
14. Rybakova A.V., Makarova M.N. A futóegér alkalmazása az orvosbiológiai kutatásokhoz // International Veterinary Bulletin. -2017, 2. sz. –S. 117-124.
15. Bondareva E.D., Rybakova A.V., Makarova M.N. A tengerimalacok kísérleti viváriumokban tartásának állattenyésztési jellemzői // International Veterinary Bulletin. -2017, 3. sz. –S. 108-115.
16. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Kísérleti állatok és emberek felső gyomor-bél traktusának összehasonlító anatómiája // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, 3. sz. –S. 116-129.
17. Makarova M.N., Makarov V.G. Laboratóriumi állatok takarmányozása. A fehérje-, zsír-, szénhidrát- és vitaminhiány és -többlet jelei. 2. üzenet // Nemzetközi Állatorvosi Értesítő. -2017, 3. sz. –S. 129-138.
18. Makarova M.N., Rybakova A.V., Kildibekov K.Yu. A vivárium és a laboratóriumi állatok óvoda helyiségeinek megvilágítására vonatkozó követelmények // Nemzetközi Állatorvosi Értesítő. -2017, 3. sz. –S. 138-147.
19. Rybakova A.V., Makarova M.N. A hörcsögök felhasználása az orvosbiológiai kutatásban // Nemzetközi Állatorvosi Közlöny. -2017, 3. sz. –S. 148-157.
20. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V. Laboratóriumi állatok takarmányozása. Az ásványi anyagok hiányának és feleslegének jelei. 3. üzenet // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, 4. sz. –S. 110-116.
21. Muzhikyan A.A., Zaikin K.O., Gushchin Ya.A., Makarova M.N., Makarov V.G. Emberek és laboratóriumi állatok májának és epehólyagjának összehasonlító morfológiája // International Veterinary Bulletin. -2017, 4. sz. –S. 117-129.
22. Rybakova A.V., Makarova M.N. A tengerimalacok felhasználása az orvosbiológiai kutatásban // International Veterinary Journal. -2018, 1. sz. –S. 132-137.
23. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Kísérleti állatok és emberek gyomor-bél traktusának alsó részének összehasonlító morfológiája // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2018, 1. sz. – P. 138-150.
24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E. G., Marie-Paule G.T. A három- vagy négyértékű élő, attenuált influenzavakcinákkal történő oltás indoklása: Védőoltás hatékonysága görénymodellben // PLOS ONE. – 2018. – P. 1-19.
25. Rybakova A.V., Makarova M.N., Kukharenko A.E., Vichare A.S., Rueffer F.-R. A gyógyszerek laboratóriumi állatokban történő adagolására vonatkozó meglévő követelmények és megközelítések // A Gyógyszerészeti Tudományos Központ közleménye. – 2018, 8. (4). – 207-217.

LABORATÓRIUMI ÁLLATOK

laboratóriumi állatok, kifejezetten orvosi, állatorvosi és biológiai kutatásra tenyésztett állatok. A hagyományosra L. zh. ide tartoznak a fehér egerek, fehér patkányok, különböző típusú hörcsögök, tengerimalacok, nyulak, macskák, kutyák; nem hagyományos gyapotpatkányoknak, pocoknak, futóegereknek, görényeknek, oposszumoknak, tatuknak, majmoknak, minimalacoknak, miniszamaroknak, erszényes állatoknak, halaknak, kétéltűeknek stb. .). Kivéve L. zh., a kísérletek háziállatokat, leggyakrabban juhot és sertést használnak. Az immun- és diagnosztikai szérumok termelői lovak, szamarak, kosok és nyulak. Számos gerinctelen állatot (például Drosophila), valamint protozoonokat is használnak kísérletekben.

L. zh. genetikai, környezeti, morfológiai mutatók és egészségi állapot szabályozzák. Speciális faiskolákban vagy tudományos intézmények viváriumaiban tenyésztik. A kísérletben használt nemlineárisak L. zh. nagyfokú heterozigótasággal kell rendelkeznie. Minél kisebb a tenyésztett nemlineáris állatok zárt populációja, annál nagyobb a beltenyésztés növekedése közöttük. A szoros beltenyésztés alapján tenyésztett homozigóta (beltenyésztett, lineáris) állatokat egyre inkább használják kutatásra (1. ábra). Mintegy 670 egér-, 162 patkány-, 16 tengerimalac-, 66 hörcsög-, 4 futóegér- és 7 csirketörzs ismert. Minden vonalnak megvannak a saját jellemzői a gének halmazában, érzékenyek a különböző antigénekre és stresszfaktorokra. A lineáris állatokat szisztematikusan ellenőrizzük homozigótaság szempontjából. Tenyésztéskor L. zh.évente 5 alom egeret kap, átlagosan 7 egeret minden alomban, patkányok 5 és 7, tengerimalacok 3 és 5, nyulak 4 és 6. L. zh.(viváriumok) rendkívül higiénikusnak, tágasnak kell lenniük, óránként 10-szeres légcserével és 5065%-os páratartalommal. 1 m 2 területen 65 felnőtt vagy 240 fiatal egeret, 20 x 100 patkányt, 30 x 40 hörcsögöt, 15 x 18 tengerimalacot, 3 x 4 nyulat helyezünk el. Egy ketrecben legfeljebb 15 egér, 10 patkány, 5 hörcsög és tengerimalac, valamint 1 nyúl helyezhető el. A vivárium területének legalább 50%-a használati helyiségekre van kijelölve. A fertőző ágensek kicserélődésének elkerülése érdekében különböző fajok tartása nem megengedett. L. zh. ugyanabban a szobában vagy ketrecben. Az egereket, patkányokat, tengerimalacokat és hörcsögöket elsősorban hálófedeles műanyag kúp alakú kádakban tartják; nyulak, kutyák, majmok és madarak fémketrecekben. A tálcákat és ketreceket 1 x 6 szintes állványokra (2. ábra) helyezik el, amelyek automata itatókkal és bunkeretetőkkel vannak felszerelve, és használat előtt alaposan mossák és fertőtlenítsék fizikai vagy vegyi eszközökkel. Az egerek és patkányok számára készült fürdőket hetente cserélik tisztára. Az alom eltávolítása és a mosás egy speciális helyiségben történik, amely megfelelő eszközökkel vagy mosógépekkel van felszerelve. Táplálkoznak L. zh. természetes takarmány vagy brikett koncentrátum a kidolgozott napi igényeknek megfelelően. A brikettezett takarmányt több napig adagolókba helyezzük. Kiszolgál L. zh. képzett, orvosi vizsgálaton átesett személyzet.

L. zh. Számos fertőző betegség jellemző: szalmonellózis, listeriosis, staphylococcosis, himlő, vírusos hasmenés, limfocitás choriomeningitis, kokcidiózis, helminthiasis, mikózisok, kullancsok által terjesztett fertőzések stb. Patogén baktériumok és vírusok rejtett hordozása (főleg patkányoknál), kevéssé vizsgált etiológiájú betegségeket találnak. Néhány fertőzés L. zh. zooantroponózisok. Betegségmegelőzés L. zh. alapja az egészségügyi és higiéniai szabályok szigorú betartása, a környezet maximális fertőtlenítése (helyiségek, levegő, berendezések, takarmány, ágynemű stb.). A termelést egyes országokban megszervezik L. zh. specifikus patogén tényezők nélkül, az úgynevezett SPF állatok (lásd). Egyre nagyobb az igény L. zh. tudományának megjelenéséhez vezetett L. zh., amely magában foglalja a genetikai, ökológiai, morfológiai, élettani, patológiai és egyéb részeket, valamint a speciális laboratóriumi állattenyésztést. Számos országban (USA, Egyesült Királyság, Németország, Franciaország, Szovjetunió stb.) működnek megfelelő tudományos központok, amelyek munkáját a Nemzetközi Tudományos Bizottság koordinálja. L. zh.(YCLAS).

Irodalom:
Bashenina N.V., Útmutató a kisrágcsálók új fajainak tartásához és tenyésztéséhez a laboratóriumi gyakorlatban. M., 1975;
Kísérleti biológiai klinikák (viváriumok) tervezésének, felszerelésének és karbantartásának egészségügyi szabályai, M., 1973.

Állatorvosi enciklopédikus szótár. - M.: "Szovjet Enciklopédia". Főszerkesztő V.P. Shishkov. 1981 .

Nézze meg, mik a "LABORATORY ANIMALS" más szótárak:

Laboratóriumi állatok- lásd Laboratóriumi állatok. (Forrás: „Mikrobiológiai szakkifejezések szótár”) ... Mikrobiológiai szótár

LABORATÓRIUMI ÁLLATOK- LABORATÓRIUMI ÁLLATOK, különböző típusú laboratóriumokban szolgáló állatok tudományos és gyakorlati célokra. L. zh. Olyanok legyenek, amelyek könnyen beszerezhetők, jól karbantarthatók vagy laboratóriumi körülmények között tenyésztettek, és ráadásul a maguk módján megfelelőek... ... Nagy Orvosi Enciklopédia

Laboratóriumi állatok- tudományos kísérletben vagy tapasztalatszerzésben, biológiai tesztelésben, oktatási folyamatban, valamint biológiai termékek előállítása során felhasznált állatok... Forrás: MINTA TÖRVÉNY AZ ÁLLATOK KEZELÉSÉRŐL (A POTENCIÁLISAN VESZÉLYES FAJTÁKKAL együtt... ... Hivatalos terminológia

LABORATÓRIUMI ÁLLATOK- tudományosan használják. cél a biológia, orvostudomány, állatgyógyászat, pp. x ve. A tudományos feladatoktól függően. A kísérlet során az L.-t választják ki, az erre a célra legalkalmasabbakat. Ez nem csak a biol. a forma jellemzői, amelyek egyszerűséget és...

Laboratóriumi állatok- kísérleti vagy kísérleti állatok, amelyeket laboratóriumokban tudományos és gyakorlati célokra használnak fel. L. zh. egészségesnek kell lennie, rendelkeznie kell bizonyos jellemzőkkel (például fogékonyság a vizsgált fertőzésekre,... Nagy szovjet enciklopédia

Modell állatok- * madelny haszonállatok * állatmodell laboratóriumi állatok, amelyeket tudományos kutatásra, különösen orvosi kutatásra használnak, örökletes emberi betegségek tanulmányozása céljából. Fogadó. vr. körülbelül 250-et használnak a kísérleti gyógyászatban... Genetika. enciklopédikus szótár

ÁLLATOK A KÍSÉRLETEKBEN- állatok felhasználása biológiai, fiziológiai és orvosi kutatásokban, különböző termékek és gyógyszerek toxicitási vizsgálataiban, különféle oktatási programokban stb. Az állatokat vagy levágják, majd megvizsgálják... ... Collier enciklopédiája

Laboratóriumi állatok- (kísérleti) változatos állatfajok, amelyeket laboratóriumokban használnak tudományos és alkalmazott célokra. Jelenleg mintegy 250 gerinces és gerinctelen állatfajt használnak a kísérleti gyógyászatban. Hagyományos a...... Mikrobiológiai szótár

ÁLLATOK- (Animalia), az élő szervezetek birodalma, a szerves rendszer egyik legnagyobb részlege. béke. Valószínűleg felmerült kb. 1 1,5 milliárd évvel ezelőtt a tengerben mikroszkopikusra emlékeztető sejtek formájában. aklorofil amőboid flagellátok. F föld... Biológiai enciklopédikus szótár

Állatok az űrben- Az 1940-es és 1950-es években a Szovjetunióban és az USA-ban kezdődtek azok a kísérletek, amelyek azt hivatottak megállapítani, hogy lehetséges-e az emberi űrrepülés. A bioűrkutatás első szakasza kutyák, majmok és más állatok ismételt repülése volt rakétákkal a magasságban... Hírkészítők enciklopédiája

Könyvek

• Laboratóriumi állatok. Tankönyv, Anatolij Alekszandrovics Sztekolnyikov, Grigorij Gavrilovics Scserbakov, Anatolij Viktorovics Yashin, A kézikönyv az állatgyógyászat és az állattudomány fontos ágairól tartalmaz anyagokat, a laboratóriumi állatok karbantartásával, takarmányozásával és betegségeivel kapcsolatban. Általánosan elfogadott módszerek szerint bemutatva, megfelelő… Kategória: Állatorvos Sorozat: Tankönyvek egyetemek számára. Speciális irodalom Kiadó:

LABORATÓRIUMI ÁLLATOK- speciálisan laboratóriumokban vagy faiskolákban kísérleti vagy ipari gyakorlatra tenyésztett különféle állatfajok. L. zh. betegségek diagnosztizálására, különféle fiziológiás és patol, állapotok modellezésére, egészségügyi szakemberek, gyógyszerek, kémiai és fizikai tényezők tanulmányozására, biológiai termékek előállítására - diagnosztikai szérumok, vakcinák, szövettenyészetek stb.

A laboratóriumi állatok különböző szisztematikus csoportokba tartoznak: protozoonok, férgek, ízeltlábúak, tüskésbőrűek, kétéltűek, madarak, emlősök. Leggyakrabban azonban L. gerinctelenekre és gerincesekre osztva.

Gerinces laboratóriumi állatok

A gerinces állatok oktatási célú felhasználása nyilvánvalóan a szarvasmarha-tenyésztés fejlődése során kezdődött. Ezt követően az élő szervezetek különféle szerveinek szerkezetét és funkcióit állatokon kezdték el tanulmányozni. Különösen ismertek az ókori görög természettudós, Diogenész (Kr. e. V. század) megfigyelései, aki állati tetemek feldarabolásával megállapította a pitvarok különböző funkcióit. Később az anatómiát és a fiziológiát állatokon tanulmányozta Arisztotelész, C. Galen, W. Harvey és mások. Kezdetben háziállatokon végeztek kísérleteket. A 15. században fehér egerek, patkányok és tengerimalacok váltak ismertté. A „laboratóriumi állatok” fogalma azonban a 19. század végére kialakult.

Összesen 250 állatfajt használnak fel az orvosbiológiai kutatásokban. Egyes fajokat folyamatosan tenyésztenek laboratóriumokban és faiskolákban tudományos kutatás céljából (fehér egerek, fehér patkányok, tengerimalacok, nyulak, hörcsögök, macskák, kutyák, majmok, minimalacok stb.). Másokat időnként kísérleti céllal fognak ki (pocok, futóegér, gopher, görény, mormota, tatu, lemming, kétéltű, hal stb.). Van egy laborcsoport. madarak (csirkék, galambok, kanárik, fürjek stb.). A méz része kísérleteket végeznek a mezőgazdaságban. állatok (birkák, sertések, borjak stb.). Az L teljes számából. az egerek kb. 70%, patkányok - 15%, tengerimalacok - 9%, madarak - 3%, nyulak - 2% és mások - 1%.

A kutatók rágcsálók iránti érdeklődése elsősorban annak tudható be, hogy sokuk kis testmérettel, magas termékenységgel és rövid élettartammal rendelkezik; A rágcsáló életének néhány hónapja alatt nyomon követhetőek a szervezetben az emberekben éveken át lezajló folyamatok. A fehér egerek átlagos élettartama 1,5-2 év, a patkányok 2-2,5 év, a hörcsögök 2-5 év, a tengerimalacok 6-8 év, a nyulak 4-9 év.

Tenyésztéskor L. genetikai, környezeti, morfológiai jellemzők, valamint egészségi állapot alapján történő ellenőrzést végezzen.

Genetikailag L. nemlineáris (heterozigóta) és lineáris (homozigóta) csoportokra oszthatók. A nem lineáris állatokat véletlenszerű keresztezések alapján tenyésztik, és ennek eredményeként nagyfokú heterozigótaságuk van. A beltenyésztés növekedése (lásd) ebben az L csoportban. generációnként legfeljebb 1% megengedett.

Azokban a tudományos intézményekben, ahol élettudományi kutatásokat végeznek, tudományos és segédegységeknek kell lenniük: vivárium (lásd) és kísérleti biológiai klinika. A viváriumban bizonyos állatfajokat tartanak és részben tenyésztenek, majd kísérleti kutatásra áthelyezik őket. A kísérleti biológiai klinikán csak olyan állatok találhatók, amelyeken kutatásokat végeznek. Külön épületben (épületegyüttesben) találhatók a viváriumok és a kísérleti biológiai klinikák. A kísérletekhez használt kétéltűek és halak számára megfelelő helyiségek vannak felszerelve.

Az L iránti egyre növekvő kereslet kielégítésére. Különböző típusok, vonalak és kategóriák, önálló gazdaságág alakult ki - a laboratóriumi állattenyésztés megfelelő tudományos és termelési alapokkal. Megszervezték a dolgozók megfelelő képzését. == Gerinctelen laboratóriumi állatok == A gerinces állatokon kívül számos gerinctelen állatot is használnak a laboratóriumokban: protozoonokat, helmintokat, ízeltlábúakat (rovarok, atkák) stb. Laboratóriumi állatként való felhasználásuk céljai és módszerei. nagyon változatos. Nélkülözhetetlen tárgyak különféle laborokhoz. A protozoákat (protozoa törzs) régóta használják kutatásra. Szaporodásuk sebessége, kis méretük, viszonylagos egyszerűségük és könnyű laboratóriumi tartásuk a protozoonokat a legolcsóbb kísérleti modellekké teszik (lásd protozoák).

Módszereket dolgoztak ki bizonyos típusú protozoonok (trypanosomes, leishmania, toxoplasma stb.) folyékony nitrogénben történő fagyasztására és hosszú távú tárolására. Ez a módszer lehetővé teszi protozoa törzsek kriobankjainak létrehozását, ami kényelmes, ha L-ként használják őket.

Számos protozoon aszexuális szaporodási képessége előfeltétele a tiszta protozoa-klónvonalak előállításának, amelyek nélkülözhetetlen tárgyként szolgálnak genetikai, immunológiai és egyéb vizsgálatokhoz.

A protozoonokkal végzett kísérletek során nemcsak fajukat, törzsüket vagy izolátumukat kell figyelembe venni, hanem gyakran azt is, hogy egy adott genetikai vonalhoz tartoznak. Nagy érték a laborban. a tartalom ismeri a protozoon fejlődésének életciklusát és ennek a ciklusnak az egyes szakaszait (lásd Életciklus).

A protozoonokkal végzett munka során a biotikus és abiotikus környezeti tényezők jelentős hatást gyakorolnak.

A nagy amőbákat (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa stb.) citogenetikai és egyéb vizsgálatokban használják, különösen az örökletes variabilitás, a mutációk előfordulásának és gyakoriságának elemzésében. Mikrosebészeti kísérletekben nukleáris-citoplazma hibrideket - heterokarionokat - kaptak, amelyeken a transzplantációs inkompatibilitás, epigenetikai variabilitás stb. jelenségeit vizsgálják. mutagenezis.

A csillók a citogenetikai kutatások klasszikus tárgyai is, beleértve a genetikai elemzést bizonyos variabilitási és öröklődési problémák vizsgálatában. A csillósok kényelmes tárgyként szolgálnak a toxikológiai vizsgálatokhoz, valamint a biol, az ultraibolya sugarak hatásának, a behatoló sugárzás és más tényezők tanulmányozásához. Ez figyelembe veszi a mozgás sebességében és természetében bekövetkezett változásokat, a kontraktilis vakuolák pulzációit, a nukleáris berendezést, az osztódási sebesség zavarait stb. Az elmúlt években bizonyos csillósfajokat széles körben alkalmaztak a molekuláris biológiai kísérletekben. különösen a géntechnológia területén. A csillós állatok in vitro tartására különféle összetételű táptalajokat fejlesztettek ki - a legegyszerűbbtől a gyógynövények és levelek infúziós formáitól a komplex szintetikusokig, előre meghatározott vegyszerekkel. fogalmazás.

Az ízeltlábúak kísérleti alkalmazásának szükséges feltétele az eredeti természetes populáció (a laboratóriumi tenyészet őse) vonal tisztaságának ellenőrzése - a kórokozókkal való természetes fertőzés hiánya, mivel a vérszívó ízeltlábúak hordozóként meghatározóak. és számos vektor által terjesztett fertőzés kórokozóinak őrzői (rickettsiosisok, arbovirális fertőzések, leishmaniasis, filariasis, malária stb.). Bármely ízeltlábú fajnak a fertőző ágensek átvitelében való részvételének mértékének, illetve az epidemiológiában és járványtanban betöltött valódi szerepének meghatározásához kísérleti vizsgálatokat kell végezni vérszívó ízeltlábúakkal és kórokozókkal.

Az Argasidae és Ixodidae kullancsokat a spirochetosis, rickettsiosis, arbovirális fertőzések stb. kórokozóinak hosszú távú megőrzésére használják.

A kullancsokat, szúnyogokat, szúnyogokat, legyeket és más ízeltlábúakat kísérletekben használják a rovarirtó, atkaölő és riasztó szerek hatékonyságának tesztelésére, valamint biol, emberi és állati kórokozók vektorai, valamint mezőgazdasági kártevők elleni küzdelemre szolgáló módszerek kifejlesztésére.

Természetes gócos emberi betegségek (encephalitis, vérzéses láz, rickettsiosis stb.) kórokozóinak hordozóiként végzett kísérleti vizsgálatokhoz, valamint atkaölő szerek hatékonyságának teszteléséhez és specifikus biológiai védekezési módszerek kidolgozásához, az ixodid kullancsok (Ixodes, Haemaphysalis nemzetség) , Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Az ixodid kullancsok könnyen tenyészthetők laboratóriumban. körülmények. Laboratórium létrehozásához. az ixodid kullancsok tenyészeteit a mezőgazdaságból gyűjtik. állatok (már részegek a vértől) vagy a természetes élőhelyek növényzetéből (éhesek). A jól táplált kullancsokat speciálisan felszerelt megnedvesített kémcsövekbe helyezik a tojásrakáshoz. Az éhes kullancsokat az L-en etetik. szövetsapkák alatt, amelyeket a gazdaállat (sertés, nyúl, egér, hörcsög, valamint juh és szarvasmarha) hátára ragasztanak. Megfelelő gondozás mellett az azonos vonalú atkák évekig tenyészthetők laboratóriumban.

Kényelmes labor. a modell az argasid atkák (Ornithodoros, Alveonasus, Argas nemzetség). A kullancsok és a kórokozók (spirocheták, vírusok, rickettsia) kapcsolatának kísérleti vizsgálatára, valamint a kórokozók hosszú távú (sok éves) aktív állapotú megőrzésére használják. A termesztés során az Argasid atkák élő szövettel vagy állati vérrel táplálkoznak egy egér vagy csirke bőréből készült membránon keresztül. Kidolgoztak egy módszert az argasid atkák csirkeembrió etetésére oly módon, hogy azokat a tojás légkamrájába ültetik. Az Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes stb. kullancsokat évtizedek óta tenyésztik laboratóriumokban.

L-ként. Gamasoidea atkákat is használnak. Közülük az Ornithonyssus bacoti (patkányatka), a Dermanyssus gallinae (csirkeatka), az Allodermanyssus sanguineus (egératka) atkák különösen alkalmasak laboratóriumi körülmények között tartásra. Gamasid atkák modellezésére használják inf. folyamat rickettsiosisban, kullancsencephalitisben, tularémiában, vérzéses lázban. A laboratóriumban rendezik az ún. növény - mesterséges fészek, amelybe kullancsokat és L.-t helyeznek el. (egerek, csirkék stb.) etetésére. Szükség szerint kullancsokat veszünk ki a növényből, és speciális párásított kamrákban tartjuk a kísérlet és megfigyelés alatt.

Kísérleti munkákhoz különböző laboratóriumokban tenyésztik a különböző nemzetségekhez tartozó vérszívó szúnyogokat (Culicidae) (Aedes, Anopheles, Culex). Egyes esetekben célszerű a Culex pipiens molestus nemzetséghez tartozó szúnyogokat használni, amelyeket könnyű laboratóriumban tenyészteni; A megtermékenyített nőstények kedvező körülmények között nem lépnek be a diapausába, és előzetes véretetés nélkül is lerakhatnak petét. A petékből kibújó lárvák szervesanyagban gazdag vízben fejlődnek.

Az Aedes nemzetségbe tartozó szúnyogok közül a legkönnyebben az Aedes aegypti fajhoz tartozó szúnyogokat tenyésztik, amelyek sárgaláz vírusok és más emberi betegségek, valamint madárplazmódia stb. hordozói. Viszonylag kis ketrecben tarthatók; A nőstény szúnyogokat nyulak vagy más állatok vérével etetik. Az Aedes nőstények által lerakott tojások hosszú ideig szárazon tárolhatók; A lárvák kikeléséhez vízzel edénybe helyezik őket. A lárvák tápláléka rizspor, daphniapor, tojássárgája stb. A lárvákat tartalmazó tartályban lévő víznek tisztának kell lennie, és nem lehet élelmiszerrel szennyezett. Az edényeket, amelyekben a bábok kialakultak, gézketrecekbe helyezik szúnyogtenyésztés céljából.

Kísérleti vizsgálatok széles skálájához, különösen a pestiskórokozók, a rickettsiosisok és más emberek és állatok bakteriális betegségeinek átvitelének tanulmányozására, különféle rovarirtó szerek, riasztószerek stb. hatásának vizsgálatára a laboratóriumban tenyésztett bolhakultúrák (Aphaniptera) használt. A laboratóriumi tenyésztéshez a legkényelmesebb bolhák a patkánybolhák - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus stb. mint L. A tetveket kórokozó spirocheták és rickettsiák hordozójaként is használják.

A tenyésztés tudományos alapjainak és az állatfajok specifikus tanulmányozásának megalapozott megválasztása érdekében a Szovjetunióban, Angliában, az USA-ban, Franciaországban, Németországban, Japánban és más országokban az állatvilág összehasonlító biológiájával foglalkozó tudományos központokat szerveztek. A Szovjetunióban ilyen központ a Szovjetunió Orvostudományi Akadémia Kísérleti Biológiai Modellek Kutatólaboratóriuma. Az ezen a területen végzett munka koordinációját a Laboratóriumi Állatok Nemzetközi Bizottsága (IC LA) végzi, több mint 40 országgal együttműködve a Krímmel, köztük a Szovjetunióval. Évente tudományos konferenciákat tartanak a L. biológiájának különböző kérdéseiről. és biol, modellezés. Több mint 30 folyóirat jelenik meg külföldön ezekről a kérdésekről. Nemzetközi és regionális központokat szerveztek: Nemzetközi Referencia Központ az Egészségügyi Szervezetben/M AIR spontán daganatfejlődésben szenvedő állatok ellátására (Hollandia, Amszterdam, Cancer Institute), FAO/WHO Állati mikoplazmák Nemzetközi Referenciaközpontja (Dánia, Aarhus , orvosi f. t un-ta). Regional Reference Center for Simian Viruses (USA, Texas, Department of Microbiology and Infectious Diseases). Referencia központok állnak rendelkezésre az ICLA-nál: egerek (PNR), patkányok (Németország és USA), tengerimalacok (USA), kutyák (Németország), rágcsálóvírusok (Csehszlovákia, Anglia, Németország, Japán), szőrtelen egerek hisztokompatibilitásával kapcsolatban ( Dánia), a madármalária kórokozóiról (Kanada) stb.

Az L.-n nyert kutatási eredmények publikációiban a WHO ajánlása szerint kötelező feltüntetni azok típusát, vonalát, korát, nemét, beszerzési forrását, tartási és takarmányozási feltételeit.

Kiegészítő anyagokból

Armadillos(kiegészítés az azonos nevű cikkhez, megjelent a 12. kötetben) - a Dasypodidae Bonaparte családba tartozó emlősök, 1838 az Edentata rendből.

A tatu családban 9 nemzetség (21 faj) található. A tatu (syn. armadillos) a legrégebbi élő emlősök, Dél- és Közép-Amerikában, az Egyesült Államok déli részén gyakoriak. Éjszakai életűek és odúkban élnek. Az „armadillos” elnevezés a test hátsó felületén egy stratum corneummal (az úgynevezett dermális csontvázzal, más emlősökben nem található) borított, egyedi csontlemezekből álló héj jelenlétével kapcsolatos. A különböző típusú tatu testhossza 12-100 cm, súlya 55 kg-ig terjed.

A tatukat az orvostudományban és a biológiában laboratóriumi állatokként használják, különösen gyakran a kilencsávos tatu - Dasypus novemcinctus Linnaeus, 1758 (1. ábra). A kifejlett kilencsávos tatu testhossza 40-55 cm, súlya 3-7 kg; a héj mell- és medencepajzsokból áll, amelyeket 9 mozgatható öv választ el egymástól. A kilencsávos tatu biológiájának jellemzői közé tartozik az alacsony testhőmérséklet (32-35°), a blasztociszta beültetésének hosszú késése - akár 4,5 hónap. (a terhesség teljes időtartama kb. 9 hónap), négy egypetéjű utód szaporodása, az exogén oxigén hosszan tartó hiányának elviselésére való képesség, csökkent sejtes immunválaszok kifejezett humorális immunválaszokkal; a várható élettartam legfeljebb 15 év.

A Dasypus nemzetséghez tartozó tatukban több embrió fejlődik ki egy megtermékenyített petesejtből (valódi poliembriónia), ami egyedülálló természetes modellt jelent az ikerképződés mechanizmusainak, valamint számos öröklődési és változékonysági kérdésnek a tanulmányozására. Az egypetéjű tatu ikrek a transzplantáció, valamint az immunológiai, toxikol és teratol kutatások tárgyát képezik. kutatás. A tatu testében lévő gyógyszerek farmakokinetikája nagyon közel áll az emberéhez. Például azt találták, hogy a talidomid magzati deformitásokat okoz a tatuban, amit más laboratóriumokban nem figyeltek meg. állatokat.

A tatu könnyen alkalmazkodik a fogsághoz. Legjobb kisméretű (2-4 m2-es) kifutókban tartani őket fészekaljzattal és homokládával. Ágyneműként általában papírtörmeléket vagy mohát használnak. A természetben főként rovarokkal és férgekkel táplálkoznak, az étrend kevesebb mint 10%-át teszik ki. A viváriumban az étrendjük darált húst, tojást, tejet, zöldségeket és gyümölcsöket tartalmaz. A tatu nem agresszív, így a gondozás és a kísérletezés nem nehéz velük. Fogságban a kilencsávos tatu nem szaporodik (egyes fajok, például a sörtéjű tatu igen).

Bibliográfia: Bashenina N.V. Útmutató a kis rágcsálók új fajainak tartásához és tenyésztéséhez a laboratóriumi gyakorlatban, M., 1975, bibliogr.; 3 a-padnyuk I. P., Zapadnyuk V. I. és 3 a x and r and I E. A. Laboratóriumi állatok, Kijev, 1974, bibliogr.; Laboratóriumi módszerek patogén protozoonok vizsgálatára, comp. D. N. Zasukhin és munkatársai, M., 1957; Lane-Petter U. Tudományos kutatás biztosítása laboratóriumi állatokkal, ford. angolból, M., 1964, bibliogr.; Medvedev N. N. Lineáris egerek, L., 1964, bibliogr.: Sarkisov D. S. and P e m e z o in P. I. Reproduction of human betegségek kísérletben, M., 1960, bibliogr.; A kokcidiák, szerk. írta D. M. Hammond a. P. L. Long, p. 482, Baltimore - L., 1973; Flynn R. Laboratóriumi állatok parazitái, Ames, 19 73; A laboratóriumi állattudomány kézikönyve, szerk. írta: E. S. Melby a. N. H. Altman, v. 1-3, Cleveland, 1974-1976; Kohler D., Madry M. u. Hein-e with k e H. Einfiihrung in die Ver such -stierkunde, Jena, 1978; Muller G.u. K i e s s i g R. Einfiihrung in die Versu-chstierkunde, Jena, 1977.; Sokolov V. E. Az emlősök rendszertana, p. 362, M., 1973; B e n i g s h k e K-val. Miért a tatu? a könyvben: Állatmodellek az orvosbiológiai kutatásokhoz, p. 45, Washington, 1968; Kirch-h e i m e r W. F. a. S t o r r s E. E. Kísérletek a tatu (Dasypus novemcinctus Linn) mint a lepra tanulmányozásának modelljéül való megállapítására, Int. J. Lepra, v. 39. o. 693, 1971; Merit t D. A. Edentate diéták, I. Armadillos, Lab. Animal Sci., v. 23. o. 540, 1973; Peppier R. D. Szaporodási paraméterek a kilencsávos tatuban, Anat. Rec., v. 193. o. 649, 1979; S t o r r s E. E. A kilencsávos tatu, az orvosbiológiai kutatások modellje, a könyvben: A laboratóriumi állat a drogtesztekben. szerk. szerző: A. Spiegel, p. 31., Jéna, 1973.

V. A. Dushkin; D. N. Zasukhin, L. M. Gordeeva; A. A. Juscsenko.

A bakteriológiai laboratóriumok diagnosztikai munkája során gyakran szükséges ún. laboratóriumi, vagy kísérleti állatok megfertőzéséhez folyamodni. A mindennapi gyakorlatban leggyakrabban kisméretű, legolcsóbb állatokat használnak erre a célra: fehér egereket és patkányokat, tengerimalacokat, nyulakat, valamint madarakat, galambokat és csirkéket. A kutyát és a macskát ritkábban, a különféle haszonállatokat pedig még ritkábban alkalmazzák. A biológiai kutatási módszerek célja a vizsgált anyag patogenitásának vagy virulencia fokának meghatározása, tiszta mikrobakultúrák izolálása az anyagból, a kórokozó mikroorganizmusok elkülönítése szaprofita fajokkal való keverékből stb. A laboratóriumi állatokat is széles körben alkalmazzák a szerológiai gyakorlatban: tengerimalacok - komplement beszerzésére , nyulak (birkák, borjak) - különböző agglutináló szérumok, hemolizin, eritrociták stb. gyártásában. Speciális tápközegek, vér, szérum, különböző szervek, szövetek stb. Ezen kívül a laboratóriumi állatokat széles körben alkalmazzák a biológiai és kemoterápiás gyógyszerek minőségének meghatározásakor, valamint tudományos és kísérleti munkákban. Laboratóriumi állatokat is használnak bizonyos fertőző betegségek diagnosztizálására, kísérleti akut és krónikus fertőző folyamatok modellezésére, a vizsgált mikrobatörzsek virulenciájának és toxicitásának megállapítására, az elkészített vakcinák aktivitásának meghatározására és biztonságosságuk vizsgálatára.

A rutinmunkát végző bakteriológiai laboratóriumok általában speciálisan erre a célra szervezett faiskolákban tenyésztik a laboratóriumi állatokat. Ez lehetővé teszi, hogy mindig elegendő mennyiségű, kifogástalan minőségű, tesztelt kísérleti anyagot szerezzünk be. Ha az állatokat nem tenyésztik, hanem csak laboratóriumban tartják, akkor a számukra kialakított helyiséget viváriumnak nevezik. Új tételeket vásárolnak az óvodáktól. Ezeken az osztályokon a tartási és takarmányozási feltételek közel azonosak, ezért az alábbi anyagban nem lesz különbség a feltüntetett laboratóriumi struktúrák között.

Rövid tájékoztató a laboratóriumi állatok karbantartásáról, tenyésztéséről, takarmányozásáról és betegségeiről

Az állatok bölcsődében történő tartása lehetőség szerint meg kell feleljen a természetben való létük körülményeinek. Ez a rendelkezés különösen vonatkozik a vadon élő, szabadon született állatokra és madarakra (vadgalambok, verebek, házi szürke egerek és patkányok). A számukra kedvezőtlen tartási és takarmányozási körülmények között ezek az állatok gyorsan elpusztulnak fogságban (különösen a verebek és a szürke egerek). Az óvoda sikeres működésének előfeltétele az összes állategészségügyi, egészségügyi, tenyésztéstechnikai és állathigiéniai szabály szigorú betartása. Utóbbiak biztosítják az állatok tágas, világos, száraz és tiszta ketrecekben, jól szellőző, normál hőmérsékletű helyiségekben való tartását, ésszerű és tápláló takarmányozását, valamint megelőző intézkedések végrehajtását a különböző betegségek megelőzése érdekében. Az óvoda szempontjából nagy jelentősége van az apák jó összetételének (hímek és nőstények).

Az óvodának (viváriumnak) több részlegnek kell lennie a különböző típusú állatok (nyulak, tengerimalacok, egerek stb.) tartására. A vivárium szerkezete a következőket tartalmazza:

az újonnan érkezett állatok karantén- és adaptációs osztálya;

kísérleti biológiai klinika kísérleti állatok tartására;

elkülönítő kórtermek fertőző betegségre gyanús és ismerten beteg állatok számára, amelyek megsemmisítése a kísérlet körülményei szerint nem kívánatos;

kísérleti helyiség (vagy manipulációs helyiség), amelyben az állatok mérését, hőmérését, fertőzését, vakcinázását, vérvételét és néhány egyéb eljárást végeznek.

A kísérleti helyiség felszereltségét minden esetben az éppen folyó tudományos kutatás feladatai és feltételei határozzák meg.

A karantén osztály, a kísérleti állatok osztálya és a fertőzött állatok elkülönítő osztálya egymástól és a vivárium többi helyiségétől szigorúan elkülönített helyiségekben található.

A fent felsorolt ​​fő szerkezeti egységeken kívül a viváriumnak tartalmaznia kell:

a) takarmánykonyha, amely két szomszédos helyiségből áll a takarmány feldolgozására és előállítására, mindegyik helyiségből a folyosóra vezető önálló kijáratokkal, egy kamrából speciálisan felszerelt (fém vagy bádoggal bélelt) ládákkal és a takarmánykészletek tárolására szolgáló hűtőszekrényekkel,

b) 2 helyiségből álló fertőtlenítő és mosó részleg, amelyeket átmeneti autokláv vagy száraz hőkamra egyesít.

A fertőtlenítő és mosó részleg munkáját a feldolgozásra kerülő anyag állapota határozza meg. A fertőzött anyagokat, mint a ketrecek, ágyneműk, etetők, először fertőtlenítik, majd mechanikusan tisztítják és mossák. A fertőzésveszélyt nem jelentő anyagot először mechanikusan meg kell tisztítani, majd (ha szükséges) sterilizálni kell.

A megfelelően szervezett viváriumban kialakított mosóhelyiségben van egy szemetes csúszda a hulladék elszállítására, valamint egy targonca az anyag és felszerelés viváriumba szállítására.

A fertőtlenítő és mosó részleg mellett található a tiszta (tartalék) felszerelések raktára ketrecekkel, ivótálakkal, etetőkkel, stb., háztartási helyiségek, valamint a kiszolgáló személyzet számára egy vizesblokk (zuhany és WC).

A meglévő egészségügyi szabályoknak megfelelően a vivárium külön épületben vagy egy laboratóriumi épület legfelső emeletén található. Amikor a viváriumot laboratóriumi épületben helyezik el, azt teljesen el kell szigetelni az összes többi helyiségtől.

A laboratóriumi állatok tartására szolgáló helyiség meleg, világos és száraz legyen, központi fűtéssel, természetes és mesterséges világítással, kényszerbefúvással és elszívással, hideg-meleg vízellátással.

A viváriumban a padlók vízálló anyagból készülnek, alaplécek nélkül, és a csatornába csatlakozó nyílások vagy ereszcsatornák felé lejtenek. A falak mázas csempével burkoltak, a mennyezet és az ajtók olajfestékkel festettek.

Tekintettel arra, hogy a vírusok csak élő sejtekben képesek szaporodni, a virológia fejlődésének legkorábbi szakaszában széles körben alkalmazták a vírusok tenyésztését a kifejezetten ezek kutatására nevelt laboratóriumi állatok testében.

Felhasználható: 1) a vírus kimutatására a PM-ben 2) a vírus elsődleges izolálása a PM-ből 3) a vírustömeg felhalmozódása 4) a vírus laboratóriumi állapotban tartása aktív állapotban. 5) a vírus titrálása 6) vizsgálati tárgyként pH 6 mellett, hiperimmun szérum kinyerése. Felhasznált állatok: fehér egerek (veszettség, ragadós száj- és körömfájás), fehér patkányok (sertésinfluenza, Aujeszky-kór), tengerimalacok (veszettség, ragadós száj- és körömfájás, kutyapír). Nyulak (veszettség, nyúlmixómák).

A laboratóriumi állatokkal szemben támasztott követelmények – az állatnak érzékenynek kell lennie erre a vírusra; korának nagy jelentősége van számos vírus tenyésztése szempontjából. A legtöbb vírus jobban szaporodik a fiatal, sőt az újszülött állatok szervezetében is; a standard érzékenységet bizonyos korú és azonos súlyú állatok kiválasztásával érik el. Az érzékenységet tekintve a több generáción át tartó beltenyésztés eredményeként nyert, úgynevezett lineáris állatok a legmagasabb színvonalúak; a laboratóriumi állatoknak egészségesnek kell lenniük. A virológiai laboratórium viváriumába kerülő állatokat fertőző betegségektől mentes telepről kell behozni. Karanténban tartják és klinikai megfigyelés alatt állnak. Ha van betegség, elpusztulnak.

Az állatokat úgy helyezzük el, hogy egyrészt minden testrendszer élettani normákon belüli működése biztosított legyen, másrészt kizárt a kölcsönös újrafertőződés és a fertőzés viváriumon túli terjedése. Különböző fajokhoz tartozó állatok esetében különböző egyéni jelölési módszereket alkalmaznak. Nagytestű állatok és csirkék esetében fémcímkéket használnak bélyegzett számmal. Kisebb állatcsoport kísérletben és rövid ideig tartó használata esetén a szőrt a háton és a csípőn lévő nyomokkal lehet levágni. A fehér egerek és fehér patkányok megjelölése az egyes ujjak amputációjával végezhető el az első vagy a hátsó végtagokon. Gyakran alkalmazzák a színes foltok pigmentetlen gyapjúra történő felvitelének módszerét. Laboratóriumi állatok fertőzése.

• 1. szubkután - hát.
• 2. Intradermális - sarok
• 3. Intramuszkuláris - comb
• 4. Intravénásan - a farokba (előzetesen forró vízzel dörzsölve és összenyomva)
• 5. Intranazálisan - orrcsepp (először gyenge éteres érzéstelenítést adnak a tüsszögés megelőzésére)
• 6. Interocerebrális - a koponyát óvatosan átfúrják tűvel, ne nyomja meg, a csepp magától elmúlik.

Minden felületet előkenünk jódozott alkohollal.

Előkészítő labor. állatok (egy fehér egér példájával)

• - A bőrt fertőtlenítőszerrel kenjük be.
• - A linea alba mentén bemetszés történik.
• - A szegycsont kinyitása - a tüdőt kivesszük és az 1. számú csőbe helyezzük
• - A hasüreg megnyitása - a májat, lépet, vesét kivesszük és a 2. számú kémcsőbe helyezzük.
• - A koponya nyitva van. Levesszük az agyat, 4 rétegből álló metszeteket készítünk, a darabokat szűrőpapírra helyezzük és üvegre nyomatokat készítünk.