Allergiás betegségek diagnosztizálása. Anamnézis, minták, tesztek, immunológiai vizsgálatok allergiára. Allergia tesztek alkalmazása betegségek diagnosztizálására A bőrtesztek eredményét befolyásoló nem specifikus tényezők

A bőrteszteket az I. és IV. típusú túlérzékenységi reakciók által közvetített allergiás betegségek azonosítására használják. A bőrtesztek elvégzésének technikáját A.D. Ado et al. módszertani levele írja le. („A nem fertőző eredetű allergének alkalmazása allergiás betegségekben szenvedő betegek specifikus diagnosztizálására és deszenzitizálására”, M., a Szovjetunió Egészségügyi Minisztériuma, 1969). A bőrtesztek standard allergéneket használnak, amelyek 10 000 protein nitrogénegységet (PNU) tartalmaznak milliliterenként. A bőrteszteket általában az alkar belső felületén végzik. Ezzel egyidejűleg mintát veszünk kontroll folyadékkal és hisztaminnal. Bőrbetegségek esetén a károsodás által nem érintett területeken végeznek vizsgálatokat. Jelenleg a következő bőrtesztek használatosak: cseppteszt, tapasz teszt, szúrási teszt, szúrási teszt, intradermális teszt.

Csepp teszt

Egy csepp standard allergént kell felvinni a 70%-os alkohollal korábban zsírtalanított bőrre. A reakciót 20 perc elteltével értékeljük. A minta értékelését a 15-1. táblázat tartalmazza.

Drop minta értékelés

Alkalmazási teszt

A 70%-os alkohollal előkezelt bőrre egy allergénoldattal megnedvesített gézdarabot (1 cm3) kell felvinni és ragasztóval rögzíteni. A reakciót 30, 60 perc, 6 óra, 12 óra, 24 óra, 48 óra, 72 óra elteltével vesszük figyelembe. A patch teszt értékelését a 15-2. táblázat tartalmazza.

A patch teszt értékelése

Prick teszt

A szúrási tesztet speciális szúrólándzsával végezzük. Az alkalmazott eszköz lehetővé teszi a befecskendezési mélység szabványosítását (1,0-1,5 mm). Az injekciót egy csepp allergén és kontroll folyadék segítségével végezzük. A szúrási teszt eredményét 15-20 perc elteltével veszik figyelembe. A szúrási teszt pontszámait a 15-3. táblázat mutatja.

Prick tesztek értékelése.

Skarifikációs teszt

A 70%-os alkohollal kezelt alkarra 0,01%-os hisztaminnal kontroll folyadékot és allergéneket (egyszerre 6-10 allergén) csepegtetünk, egymástól 4-5 cm távolságra. Minden csepp után két párhuzamos, egymástól 4-5 mm hosszú, egymástól 2 mm-es karcolást hordunk fel súroló segítségével. A karcolások felületessé válnak anélkül, hogy károsítanák a bőrereket. 10 perccel a bőr hegesítése után a cseppeket vattacsomóval le kell törölni. A mintákat 10-20 perc elteltével megszámolják. A karcolási tesztek pontozását a 15-4. táblázat tartalmazza.

Karctesztek értékelése.

Emlékeztetni kell arra, hogy a karcolási tesztek gyakran hamis pozitív reakciókat adnak.

Intradermális tesztek

Általában mikrobiális allergénekkel végezzük. Nem fertőző allergének esetén csak olyan esetekben végezzük, amikor a tapasz- és szúrási tesztek negatív eredményt adnak, és a kórelőzmény egyértelműen allergiát jelez.

A vizsgálati technika a következő: az alkar vagy a hát bőrének 70°-os alkohollal történő kezelése után 0,02-0,1 ml allergént injektálnak intradermálisan inzulinfecskendővel. Az intradermálisan beadott allergénnek 10-szer kevésbé koncentráltnak kell lennie, mint a karcolásos teszt során. Kontrollként egy kontrollfolyadékot és egy hisztamin szikrázó oldatot fecskendeznek be intradermálisan. A vizsgálati eredményeket 20 perc, 6 óra, 12 óra, 24 óra, 48 óra elteltével veszik figyelembe az értékelési skála szerint, mivel a fertőző allergénekre adott reakciók azonnali és késleltetett formában is előfordulhatnak.

Emlékeztetni kell arra, hogy az intradermális tesztek kevésbé specifikusak, mint a bőrtesztek, és gyakran hamis pozitív és álnegatív eredményeket adnak. Az intradermális teszteléshez az egyidejűleg vizsgált allergének száma nem haladhatja meg a 4-5-öt.

Az intradermális tesztek értékelése

A reagin IgEként való felfedezésével lehetővé vált az érzékenység kimutatása in vitro módszerekkel. Az atópiás betegségek klinikai diagnózisa csak speciális laboratóriumokban megengedett. Mind a vizsgált betegeken, mind a passzívan szenzitizált egyéneken végzett bőrtesztek értékesek. Először 1873-ban Blackley reprodukált helyi allergiás reakciót egy pollenre érzékeny beteg kötőhártyáján és bőrén. Az allergiatesztek azon a tényen alapulnak, hogy egy allergén kis dózisának alkalmazásával antigén-antitest reakciót lehet kiváltani. Az allergénvizsgálatot sokkszerveken, különösen allergiás rhinitisben - az orrnyálkahártyán, bronchiális asztmában - a hörgőkön lehet reprodukálni. Ezek a módszerek azonban munkaigényesek és nem mindig biztonságosak. A legelérhetőbbek a bőrtesztek és a nyálkahártya-tesztek. Ez utóbbiakat provokatív tesztnek tekintik, mivel utánozzák az allergén testbe jutásának természetes útját.

Bőrtesztek. Beállításuknál arra alapoznak, hogy az atópiás betegeknél a nyálkahártyákon, valamint a légúti és gasztrointesztinális traktus limfoid szövetében tapasztalható magas reagintermelés ellenére az antitestek jelentős része a keringésbe kerül. Ez határozza meg más szervek és szövetek szenzibilizációs állapotát. A vizsgálat célja antigén-antitest reakció előidézése alacsony dózisú allergén helyi alkalmazásával anélkül, hogy a szervezetben funkcionális rendellenességek vagy általános reakció kialakulása veszélye állna fenn. Ennek a módszernek az előnyei közé tartozik a jelentős mennyiségű allergén egyidejű beadásának lehetősége.

Az allergén alkalmazásának típusától függően különböző tesztek léteznek: szúrási és karcolási teszt, intra- és bőrön.

Bőrteszt szúrással- Ezt a módszert választják a páciens kezdeti vizsgálata során. Az antiszeptikummal előkezelt területre (alkar tenyér oldala, hát) csepp allergén oldatot csepegtetünk. A szúrás lándzsával, tűvel vagy kanüllel történik. Az allergén felszívódásának megkönnyítése érdekében a teszt módosítását alkalmazzák - az injekció beadása után a bőrt felemelik, és az injekció helyén könnyű bemetszéseket végeznek. A szúrásnak felületesnek kell lennie, hogy ne okozzon vérzést. A tesztterületek közötti távolság legalább 4 cm Minden vizsgálat után a műszert ki kell cserélni, vagy alaposan sterilizálni kell, hogy elkerüljük a hamis pozitív reakciót. A kivonatok készítéséhez használt oldatok kontrollként szolgálnak (a reakciónak negatívnak kell lennie), a frissen készített hisztamin oldat pedig a bőr reakcióképességének értékelésére szolgál.

Az eredményeket 20 perc elteltével veszik figyelembe. Az értékelési kritérium a hólyag és az erythema zóna átlagos átmérője.

Skarifikációs teszt. Lancetával körülbelül 0,5 cm hosszú bemetszéseket készítenek a bőr felületén, és bizonyos elővigyázatossággal (a vérzés elkerülésére) enyhén dörzsöljük be az allergént. A reakció elszámolása hasonló a fentiekhez. Nem szabad megfeledkezni arról, hogy a hámozás során elkerülhetetlenek a különböző mértékű bőrkárosodások, így az allergén felszívódásának folyamata nehezen irányítható.

Mindkét mintának számos előnye van. Tehát nem igényelnek különösebb kiadást, viszonylag biztonságosak és fájdalommentesek. Ez különösen fontos kisgyermekeknél végzett vizsgálatok során.

Bőrablak teszt- Ez tulajdonképpen a szkarfikációs teszt módosítása. A bőr felületén bemetszéseket végzünk, hozzáadjuk az allergént és fedőlemezzel lefedjük. 24 óra elteltével a tárgylemezt eltávolítjuk és megfestjük a vándorló sejtek azonosítására. Az allergiás reakció indikátora az 5%-ot meghaladó eozinofília. A teszt hátrányai közé tartozik, hogy eredményei nem mindig reprodukálhatók.

Intradermális teszt elsődleges vizsgálati módszerként szolgál, ha nincs jele nagyfokú szenzibilizációnak. A vizsgálatot általában a páciens vállán vagy hátán végzik. A bőrt alkohollal kezelik, majd körülbelül 0,2 ml allergén kivonatot fecskendeznek be szigorúan intradermálisan. Erre a célra kényelmes a 18-as vagy 20-as számú kanül használata. A bőr nagy érzékenysége miatt egyes betegeknél nem lehet meghatározni az allergén pontos dózisát. Ezenkívül az allergén nagy dózisainak alkalmazása a páciens traumájával jár. Kontrollként a következők szolgálnak: a kivonat készítésére szolgáló oldat (negatív reakció) és egy frissen készített hisztamin oldat. Már 20 perc elteltével figyelembe lehet venni a reakció eredményeit. A pozitív tesztet buborékképződés kíséri, a periféria mentén hiperémia zónával. Pozitív reakció negatív kontroll esetén 7, illetve 15 mm átmérőjű hólyag és hiperémia zóna kialakulása. A bőrmegnyilvánulások átmérőjének és az allergén vagy hisztamin koncentrációjának összehasonlító elemzése bizonyos mintázatot mutatott ki.

Bőrvizsgálati eredmények és értelmezésük.

1. Helyi reakciók. a) A korai reakció 10 perc után következik be, és 20-30 perc múlva éri el a maximumot (hólyag átmérője 1 mm, erythema zóna - 15 mm). b) Magasabb antigénkoncentrációnál gyakran megfigyelhető késleltetett típusú reakció (szénanátha, állati szőr okozta szenzibilizáció). A vizsgált alanyok egy részénél a precipitin képződése okozza. Bebizonyosodott, hogy az IgE antitestek késleltetett típusú reakciót válthatnak ki 4-12 óra elteltével bőrpír és duzzanat kialakulásával, amelyet viszketés és néha fájdalom kísér. A szövettani elemzés kimutatja az eozinofilek, neutrofilek és mononukleáris sejtek beszűrődését ödémával együtt. Minden valószínűség szerint olyan tényezők játszanak szerepet, mint a kallikrein és az FCN-A.

2. Általános reakciók. A betegek gyakran tapasztalnak fokális reakciókat, amelyeket az alapbetegség tünetei kísérnek. Ezt elősegíti, hogy a sokkszervek felkészültek az immunválaszra. Ez a reakció természetesen nem kívánatos. Másrészt megnyilvánulása ennek az érzékenyítésnek a patogenetikai jelentőségének bizonyítékának tekinthető.

A szövődmények súlyos formáit elsősorban nagyfokú szenzibilizáció esetén figyelik meg. A legveszélyesebb az anafilaxiás sokk.

Az allergén kiválasztása. Elvileg három lehetséges bőrvizsgálati lehetőség van:

- „Megerősítő teszt” (azokat az allergéneket adják be, amelyekről úgy gondolják, hogy patogenetikai jelentőséggel bírnak). Ebben az esetben az orvos a kórtörténetre támaszkodik.

A „keresés” tesztet azoknak a betegeknek írják fel, akiknek anamnézisében nincs megerősítésre vagy felülvizsgálatra szoruló adat. Az allergének kiválasztása azonban nem korlátozott.

Az érzékenység mértékének meghatározása. Megtörténik az úgynevezett bőrtitrálás, azaz bizonyos mennyiségű allergén bejuttatása a provokatív tesztben használt dózis vagy a deszenzitizáció során a kezdő dózis kiválasztására, illetve az utóbbi kontrollálására. Ezek az indikátortesztek fontosak az allergén megfelelő kivonatának és dózisának kiválasztásához. A reakciók nem tartalmaznak olyan anyagokat, amelyekkel a beteg nem érintkezett. Lehetőség van kivonatok keverékeinek felhasználására. Éppen ezért az allergén tesztet olyan orvosnak kell elvégeznie, aki jól ismeri a betegség történetét és természetét.

Nézzük meg az allergének leggyakoribb csoportjait.

A) Pollen: fűfélék (rókafarkkóró, csótány, rozmaring, ctenofor, búzafű, csalán, csenkesz, útifű, sóska, évelő rozs); virágok (margaréta, tűzfű, mák, tulipán, aranyvessző, chistyak, pitypang, réti szív, boglárka); gabonafélék (rozs); cserjék (csipkebogyó, bodza, kutyarózsa, orgona, mogyoró); fák (nyír, hárs, fehér akác, fűz, fenyő, éger, gesztenye, cseresznye).

B) Az állatok és az emberek hámrétegének elemei: korpásodás (nyúl, macska, kutya, kos, bika, kecske, sertés, ló); tollak (liba, kacsa és csirke); emberi korpásodás.

B) Házi por.

D) Kullancsok.

E) Penészgombák: Penicillium, Aspergillus, Mucor, Cladosporium, Hormodendrum, Alternaria.

E) Táplálék: édesvízi halak (pisztráng, csuka, ponty, csuka, süllő); tengeri és óceáni halfajok (tőkehal, ruffe, hering, makréla); hús (sertés, marha, bárány, lóhús, kecske, baromfi); tej (tehén és kecske, friss és főtt), tojás (fehér és sárgája); gabonafélék (búzaliszt és -korpa, rozs, árpa, zab, kukorica); gyümölcsök és hüvelyesek.

A következő nem specifikus tényezők befolyásolják a tesztreakciók eredményeit:

1. Helyi vérellátás. A hideg évszakban a beteg érrendszeri rendellenességeket tapasztalhat, a bőr hőmérsékletét vissza kell állítani a normál értékre (ehhez a bőrt alkohollal vagy éterrel töröljük le). A bőrvizsgálat nemkívánatos következménye a hiperémia formájában jelentkező kifejezett reakció.

2. Az allergén bevezetésének helye. Megjegyzendő, hogy a háton okozott reakciók kifejezettebbek, mint a vállon. Ebből azonban nem következik, hogy a vállon a reakció álnegatív lehet. Az eredményeket befolyásolhatja az időjárás, az ultraibolya és a röntgensugárzás.

3. Természetes érintkezés az allergénnel. Közvetlenül az allergén hatalmas dózisai által okozott reakciók után az antitestszint enyhén csökken. Az allergén hosszú távú eliminációja (több mint 1 év) is ezt a hatást adja. Összehasonlításképpen, az allergénnek való hosszan tartó expozíció, például a fű virágzási időszakában, fokozott reakcióhoz vezethet.

4. Gyógyszerek. Az antihisztaminok megfelelő dózisban elnyomhatják a tesztreakciót, ezért ezeket 2-7 nappal, az adrenalin származékokat pedig egy nappal a bőrvizsgálat előtt abba kell hagyni. Az inhalációval adott izoprenalinnak nincs jelentős hatása. Az aminofillin hatása is gyenge. A kortikoszteroidok és az ACTH terápiás dózisban csekély hatással vannak az azonnali válaszre. Csak nagy dózisú kortikoszteroidok vagy helyi kortikoszteroidok csökkenthetik a reakciót. Megfigyelték a reakció késleltetett (késői) fázisának kortikoidok általi elnyomását.

5. Életkor. Egy összehasonlító elemzés kimutatta, hogy kisgyermekeknél a bőrreakciók kevésbé kifejezettek, mint a felnőtteknél. Ez nem csak a reagin alacsony koncentrációjának köszönhető. Megállapítást nyert, hogy az azonos szérummal végzett passzív bőrszenzibilizáció esetén a reakciók súlyossága gyermekeknél sokkal alacsonyabb. Az 1. életévben gyermekeknél is alacsony szintű szenzibilizációt észleltek. Általános szabály, hogy a fiatalok és a középkorúak csoportjai között nincs különbség. Csak néhány 50 év feletti betegnél csökken az allergénre adott válasz, és ezzel egyidejűleg a specifikus IgE koncentrációja.

6. A napi bioritmusok is befolyásolhatják a bőrteszt teljesítményét (az átlagos szint 5-71%-án belüli válaszingadozást észleltek). A minimális eltéréseket délelőtt 11 óra körül, a maximumot 23:00-kor észleljük. Úgy gondolják, hogy ez a jelenség hormonok, különösen a 17-hidroxi-kortikoszteroidok termelésével függ össze.

Ha kizárjuk a módszer összes lehetséges hibáját, akkor a bőrtesztek pozitív eredményei igazolják az immunológiai értelemben specifikus szenzibilizáció tényét. Azonban nem mindig tudják megerősíteni a betegség diagnózisát. A negatív reakció sem zárja ki az érzékenység lehetőségét. Ezenkívül a reakció súlyossága alapján lehetetlen következtetést levonni a vizsgálat eredményeinek patogenetikai jelentőségéről.

A hamis negatív reakciót a következő hibák okozhatják:

Az allergén aktivitást vesztett kivonatok eltarthatósági idejének túllépése;

Egy adott allergén hiánya (ez különösen igaz, ha a háziporral szembeni allergia gyanúja merül fel);

Az allergén bejuttatásának nem fiziológiás módszere (negatív reakció esetén számos allergén kerül a szervezetbe az élelmiszerekkel és a gyógyszerekkel), provokatív tesztet írnak elő;

A szenzibilizáció korai szakaszai (az allergia klinikai megnyilvánulása már a betegség korai szakaszában lehetséges, mivel a szintetizált reaginok gyorsan kötődnek a sejtfelszínhez; ez utóbbi koncentrációja azonban nem biztos, hogy elég magas ahhoz, hogy pozitív reakciót váltson ki);

Csökkent immunválasz képessége a gyógyszerszedéssel, a beteg életkorával stb. Ezekben az esetekben a hisztaminnal végzett kontroll teszt mutatói is csökkennek.

A téves pozitív reakciót a következő okok okozhatják:

Allergének irritáló hatása (egészséges egyének bőrtesztjei alapján az allergének optimális egyéni dózisait választották ki és javasolták);

Fokozott bőrérzékenység (mechanikai irritáció, csalánkiütés, pozitív kontroll reakció).

Az anamnesztikus adatok és a bőrvizsgálati eredmények elemzése a következő mintákat tárta fel:

1) Ha a bőrteszt pozitív és az allergén ismert, akkor az érzékenység ténye kétségtelen.

2) Ha a reakció negatív, és az allergént nem azonosították, akkor valószínűtlen, hogy a kérdéses allergén okozza a betegséget.

3) Ha pozitív teszt esetén nincs információ az allergénről, akkor át kell tekinteni az anamnézis adatait, és meg kell győződni a pozitív reakciók valódi okáról. Van egy ismert állapot, amelyet „látens szenzibilizációnak” neveznek. Ezenkívül a klinikai gyógyulás után a betegek gyakran hosszú ideig pozitív bőrtesztet mutatnak. Egyes esetekben „szubklinikai szenzibilizációt” észlelnek. Figyelembe kell venni a pozitív teszt lehetséges okait.

Szövődmények bőrvizsgálattal. A fő veszély az allergén nagy dózisainak alkalmazásakor merül fel: késői és általános reakciók kialakulása a legvalószínűbb. A beteg állapotának súlyosbodásának veszélyével együtt az allergiás állapotok összes tünete, beleértve az anafilaxiás sokkot is, megjelenhet.

A provokatív teszt az allergén vizsgálatának megbízható módszere, amelyben a gyanús anyag fiziológiás úton történő alkalmazása okoz jellegzetes tüneteket. A teszt különböző verzióinak két követelménynek kell megfelelniük: 1 - lehetőség szerint a vizsgálandó allergént különböző dózisokban kell beadni a megfelelő szervbe, 2 - az antigén-antitest reakció értékelésének objektívnek kell lennie.

A vizsgálat elvégzésének feltétele az allergénnel való természetes érintkezés hiánya, mivel egyébként ez jelentősen megnehezíti az eredmények értelmezését. Célszerű, hogy a beteg ne tudja, melyik allergént adják be ("vak" módszer). A kontroll egy teszt, amelyben a kivonat készítésére szolgáló oldatot (placebo) alkalmazzák.

Teszt az atópiás reakcióért felelős feltételezett allergén kizárására. Általában anamnesztikus adatok alapján. Ezt a tesztet a betegség előrehaladott stádiumainak diagnosztizálására használják, hogy meghatározzák a beteg gyógyulási esélyeit.

BŐRTESZTEK- diagnosztikai módszer az emberi vagy állati test specifikus szenzibilizációjának azonosítására allergén bőrön keresztül történő bejuttatásával és a bőr gyulladásos reakciójának felmérésével.

A K. o.-nak két módja van. A közvetlen módszer, amikor az allergént károsodás nélkül vagy bőrkárosodással adják be, lehet csepegtető, felhordás (epikután, vagy foltos), szőrtelenítés, injekciós teszt és intradermális. A közvetlen módszer hideg- és hőteszteket is tartalmaz. Az indirekt módszer a Prausnitz-Küstner passzív transzfer reakció (lásd Prausnitz-Küstner reakció), amikor a páciens szérumát a benne lévő antitestekkel intradermálisan befecskendezik egy egészséges emberbe, majd ugyanoda juttatják be az allergént, amelyre a beteg érzékeny. Ezt a technikát akkor alkalmazzák, ha a közvetlen bőrvizsgálat lehetetlen vagy nagyon veszélyes (például a penicillinnel szembeni anafilaxiás típusú túlérzékenység esetén), és specifikus diagnózis szükséges.

A gyulladásos reakció fellépésének időpontjától függően megkülönböztetnek azonnali (I. és III. típusú allergiás reakciók) és késleltetett (IV. típusú allergiás reakciók) típusokat (lásd Allergia). Az azonnali típusú K. mechanizmusa azon alapul, hogy a test érzékenyítése során a reaginok nemcsak a sokkszervek szöveteiben rögzülnek (lásd anafilaxia), hanem a bőrsejtekben is. Ha egy adott allergént (antigént) viszünk fel a bőrre, allergén-antitest reakció lép fel, és biológiailag aktív anyagok szabadulnak fel (lásd: Allergiás reakciók közvetítői). 15-20 perc után. hólyag képződik, amelyet hiperémia zóna vesz körül, amely hólyagos-erythemás típusú gyulladásos reakció (I. típusú reakció). A III-as típusú reakciókban duzzanat és hiperémia alakul ki az allergén injekció helyén. Ezek a változások 3-4 óra múlva jelentkeznek, és 7-8 óra múlva érik el a maximumot. és 24 óra múlva eltűnnek. A III-as típusú Kp-t az allergiás reaktivitás megnyilvánulásának tekintik, mint például az Arthus-jelenség (lásd Arthus-jelenség), és a keringő precipitin jelenlététől függ. Késleltetett reakciókra, amelyek 24-48 óra elteltével jelentkeznek. allergénnel való érintkezést követően a limfoid sejtek részt vesznek a K. p. helyén lévő infiltrátum képződésében. Amikor a limfocita receptorok kölcsönhatásba lépnek egy allergénnel, mediátorok szabadulnak fel a limfocitákból, ami gyulladásos reakciót vált ki.

A bőrvizsgálati technika megválasztása a betegségtől, az allergiás túlérzékenység várható mértékétől és típusától (azonnali, késleltetett), valamint a vizsgált allergén csoportjától függ. Egyszerű vegyszerekre fokozott érzékenységgel. anyagok, bizonyos gyógyszerek stb., klinikailag kontakt allergiás dermatitiszként kifejezve, csak az alkalmazás K. tételek bírnak diagnosztikai értékkel Asztma bronchiális, allergiás nátha, szénanátha esetén, amelyeknél fokozott érzékenység várható a nem bakteriális eredetű allergénekkel szemben, a vizsgálat. próbainjekcióval vagy szúrópróbával kezdődik. Csalánkiütés, Quincke-ödéma, ételallergia és migrén esetén a K. p. segítségével ritkábban észlelhető az allergia, mivel számos ételallergén negatív eredményt ad, amelyek per os fogyasztva egyértelműen meghatározott betegséget okoznak. . K. o. gyógyszerekkel megbízhatatlanok. A negatív K. o. nem jelenti azt, hogy nincs érzékenység erre az allergénre, mivel ilyen esetekben súlyos anafilaxiás reakciók lépnek fel. A bakteriális allergéneket általában intradermálisan vizsgálják (a Pirquet teszt kivételével). A szkarfikációs technikával nem adnak kellően egyértelmű eredményt, ami a nem bakteriális kivonatokhoz képest alacsonyabb specifikus anyagtartalomnak köszönhető.

A K. stádiumba állításakor figyelembe kell venni a bőr egyenlőtlen reakcióképességét. A legérzékenyebb bőr az alkar elülső felülete, a mellkas, a has, a hát a gerinc közelében és a lapockák felett. Az ulnaris fossa reakciója erősebb, de kevésbé specifikus. A bőrérzékenység a betegség súlyosbodása során vagy közvetlenül utána kevésbé kifejezett. A K. stádiumba állításakor ritkán fordulnak elő általános reakciók, például anafilaxiás sokk (lásd). A szövődmények gyakrabban figyelhetők meg olyan erős allergének alkalmazásakor, mint a növényi pollenből, állati szőrből és hámból, rovartestekből és állati szérumból származó allergének. A legnagyobb veszélyt a gyógyszerek jelentik, különösen az antibiotikumok (különösen a penicillin). A penicillinnel végzett vizsgálatot akkor kell elvégezni, amikor feltétlenül szükséges, nagyon magas hígítások alkalmazásával; A vizsgálat azzal kezdődik, hogy egy csepp tesztoldatot viszünk a bőrre, és csak negatív reakció esetén végezzünk karcolási tesztet. Az általános reakciók, például az anafilaxiás sokk megelőzése érdekében a nem bakteriális allergének tesztelését a szarizációs módszerrel kell kezdeni, szigorúan betartva az összes szükséges óvintézkedést, és csak akkor, ha az eredmény negatív, váltson intradermális módszerre. Tekintettel arra, hogy a bőr allergiás érzékenysége és a „sokk” szervek között nincs teljes összefüggés, az allergiás betegségek specifikus diagnosztikájában nem lehet csak a K. o jelentőségű, ha eredménye teljes mértékben megfelel az anamnesztikus adatoknak. Ha az anamnézis adatok nem egyeznek meg K. p. eredményeivel, más kutatási módszereket alkalmazunk: in vivo - provokatív tesztek (lásd), in vitro - IgE antitestek meghatározása a vérben radioallergoszorbens módszerrel, specifikus hisztamin felszabadulási teszt , basophil teszt (lásd) stb. d.

A csepegtető teszteket a gyógyszerekkel, elsősorban az antibiotikumokkal szembeni érzékenység kimutatására használják. Alacsony koncentrációjú anyagokat használnak: 0,25%-os novokain oldatot, 0,5-100 U/ml antibiotikumot, 2,5%-os rezorcin oldatot stb. A has bőrén vagy az alkar elülső felületén, 70%-os alkohollal előkezelve, vigyen fel egy cseppet a vizsgált anyagból, és rajzolja meg ceruzával a mintaterületet. Ezzel egyidejűleg egy oldószeres ellenőrző tesztkészletet helyeznek el. A bőr reaktivitásának kimutatására 0,01%-os hisztamin oldatot használnak - pozitív kontrollként. Vegye figyelembe az azonnali (20 percen belül) és a késleltetett (24-48 órán belüli) reakciót. Pozitív reakció esetén bőrpír, ödéma, papulák és hólyagos elemek alakulnak ki az anyag cseppjének alkalmazási helyén. Negatív reakció esetén folytatják a karifikációt.

Alkalmazási tesztek alatt használják prof. bőrbetegségek, és olyan provokatív tesztek, amelyek során a vizsgált anyag ismert mennyiségét az alkar, a hát vagy a has elülső felületének olyan bőrterületére visszük fel, amelyet nem károsít a bőrgyulladás, hogy a folyamatot miniatűrben reprodukálják. Alkalmazás K. tételek könnyebben ellenőrizhetők, mint a mélyebb bőrkárosodással járó reakciók (hegesedés és intradermális). Vannak zárt és nyílt pályázati tesztek. A nyitottakat olajos-gyantás vagy folyékony anyagokhoz használják. Az anyagot vagy közvetlenül a bőrre (festékek, kozmetikumok), vagy „bőrablak” formájában alkalmazzák, amelyen keresztül megfigyelhető a reakció: a bőrt 70%-os alkohollal kezelik és szárítják; Ezt követően egy négyzet alakú celofán- vagy üvegdarabot három oldalról ragasztógipsszel rögzítenek, és a tesztfolyadékot a kapott zsebbe fecskendezik. A zárt alkalmazási teszteket az alábbiak szerint végezzük. A vizsgálati oldattal megnedvesített, 1 cm2-es négyzet alakú gézdarabot helyezünk a bőr felületére. Fedjük le a tetejét egy kicsit nagyobb darab celofánnal vagy viaszpapírral, és zárjuk le úgy, hogy a géz ne nyúljon túl a matrica szélén (hogy ne száradjon ki gyorsan). A tesztoldatokkal egyidejűleg kontrollként teszt kontroll folyadékkal vagy fiziololdattal végzett tesztet adunk. A vizsgált anyag oldatát úgy kell kiválasztani, hogy egészséges emberben ne okozzon bőrirritációt. Ha viszketés vagy égő érzés jelentkezik a vizsgálati helyen, a páciensnek el kell távolítania a matricát és a gézt, és alkohollal vagy éterrel távolítsa el a bőrfelületről a maradék vizsgálandó anyagot. A vizsgált anyagot legfeljebb 5 napig tartják a bőrön. A K. p. alkalmazás eredményét 20 perc, 12 óra, 1, 3 és 7 nap elteltével értékeljük. az anyag eltávolítása után (színes 1-3. ábra). A K. o. alkalmazási specifitása nagyon magas, ha az alkalmazásukra vonatkozó összes technikai szabályt betartják, azaz az allergén koncentrációját helyesen választják meg, figyelembe veszik a kontroll minta indikátorait stb. Specifikusságuk hasonló a specifikussághoz. a scarification K. p. és sokkal magasabb, mint az intradermális. A biztonság lényegesen magasabb, mint az intradermális teszteknél, mivel a bőrsejtek felszíni rétegei megakadályozzák az allergén gyors bejutását a szervezetbe. Ha a reakció gyors, az allergént eltávolítják. Késői típusú reakció esetén az allergén is eltávolítható, amint a bőrirritáció tünetei megjelennek. Az antihisztaminok bevétele nem befolyásolja a vizsgálati eredményeket; a kortikoszteroid gyógyszerek éppen ellenkezőleg, jelentősen csökkentik a reakció intenzitását.

Skarifikációs tesztek E. Schloss 1912-ben vezette be a gyakorlatba. Kevésbé érzékenyek, mint az intradermális tesztek, de specifikusabbak és biztonságosabbak. A hegesedési vizsgálatokat az alkar elülső felületének bőrén végezzük. 1000 és 10 000 PNU-t (protein nitrogén egység) tartalmazó pollen-allergéneket és 5000-10 000 PNU-t tartalmazó háztartási és epidermális allergéneket használnak. Ha az allergén kivonat 20 000 PNU-t tartalmaz, azt tesztkontroll folyadékkal hígítjuk. A steril allergének cseppjeit 70%-os alkohollal előkezelt és szárított bőrre helyezik egymástól 3-4 cm távolságra. Az allergéneket fecskendőtű segítségével gumidugókon keresztül szívják ki a palackokból (minden allergénhez külön fecskendőt használnak). Ezután az allergén minden cseppjén keresztül két párhuzamos, egyenként 0,5 cm hosszú karcolást készítenek külön tűvel vagy súrolóval, hogy ne sértsék meg az ereket. Por alakú allergének alkalmazásakor először csepp teszt-ellenőrző folyadékot csepegtetünk a bőrre, majd száraz steril tűvel (minden allergénhez külön tűvel) kis mennyiségű allergént veszünk (a tű hegyén), majd hozzáadjuk. egy csepp teszt-ellenőrző folyadékhoz, és ugyanazzal a tűvel végezzük a szikesítést. Negatív kontrollként vizsgálati kontroll folyadékkal, pozitív kontrollként pedig 1:10 000 hígítású hisztaminoldattal kell egyidejűleg 20-nál több vizsgálatot végezni. A szivacsosodási tesztek eredményeit 20 perc elteltével értékeljük. (színes 4-5. ábra).

Injekciós teszt a scarification K. o. módosítása, ezzel a teszttel kisebb az erek károsodásának lehetősége, mint a scarification esetén. Ugyanazokkal az allergénekkel hajtják végre. Az injekciós teszthez az allergén töményebb oldatát veszik be, mint a szőrtelenítési eljárás során, mivel minimális mennyiségű allergén kerül a bőrbe. Az injekciós vizsgálati technikának számos módosítása van. A klasszikus tesztet a következőképpen hajtjuk végre. A teszt allergénből egy cseppet a korábban fertőtlenített bőrre helyeznek, és a cseppen keresztül tűvel átszúrják a bőr hámrétegét. Az injekciós teszt értékelése ugyanúgy történik, mint a szúrási tesztnél. Csak miután negatív eredményt kaptak ebből a tesztből vagy egy nem bakteriális allergénekkel végzett karcolási tesztből, folytatják az intradermális teszteket.

Intradermális tesztek elsősorban bakteriális vagy gombás eredetű allergénekkel szembeni érzékenység kimutatására használják. Az allergiás betegségek diagnosztizálására először R. Cook javasolta őket 1911-ben. Az intradermális tesztek jelentős segítséget nyújtanak a tuberkulózis (Mantoux-reakció), a brucellózis (Burnet-reakció), az echinococcosis (Casoni-reakció) stb. diagnosztizálásában. Az intradermális Mantoux reakció kiegészíti a Pirquet tesztet.

Ha az allergént intradermálisan adják be, akkor az szorosabb érintkezést biztosít a bőrsejtekkel, mint a szikrázással. Ezért az intradermális tesztek körülbelül 100-szor érzékenyebbek, de kevésbé specifikusak, mint a prick tesztek. Helyi és általános allergiás szövődményeket okozhatnak. Az intradermális vizsgálatokhoz 0,01 ml-es beosztású fecskendőket és vékony, rövid ferde tűket használnak, és nem tompított hegyet. Minden allergénhez külön fecskendő és külön tű szükséges. Az alkar elülső felületének bőrét először 70%-os alkohollal kezelik. Az injekciót a következőképpen hajtják végre: egy tű hegyét, amelyet egy kis mennyiségű vizsgált allergént tartalmazó fecskendőre helyeznek, nagyon kis szögben szúrják be az epidermisz felszíni rétegébe úgy, hogy a tűt felfelé vágják úgy, hogy a tű lyuk teljesen el van rejtve az epidermiszben (ábra), ami után a szükséges mennyiségű allergént intradermálisan injektálják. Minél felületesebb az injekció, annál nagyobb a bőr érzékenysége. Ugyanazon allergénre adott reakció nagyon gyenge lesz, intramuszkulárisan beadva. A helyes injekciós technika mellett az injekció beadása után azonnal infiltrátum képződik a bőr felszínén. A nem fertőző allergének vizsgálatakor 0,01-0,02 ml kivonat mennyiségét intradermálisan adják be. A bakteriális allergéneket nagy mennyiségben - 0,05-0,1 ml - adják be. A teszt-ellenőrző folyadékkal párhuzamos tesztelés kötelező. Ugyanakkor legfeljebb 10 intradermális tesztet végezhet különböző csoportokból származó allergénekkel. Negatív és gyenge reakciók esetén további 10 tesztet kell végezni. A teszt eredménye 15-20 perc múlva látható. és 24 és 48 óra elteltével. (színes 6-12. ábra).

Hideg és termikus tesztek. A diagnosztikára az ún Fizikai allergiák esetén hideg- és hőteszteket alkalmaznak. Hidegteszt során 2-3 cm átmérőjű jégdarabot rögzítünk az alkar tenyérfelületének bőrére 3 percre. vagy vízzel töltött kémcsőben jégdarabokkal 10 percig. Pozitív reakció esetén (kontakt típusú hideg csalánkiütés esetén) csalánkiütéses hólyag képződik a bőrön, általában „pszeudopodia” nélkül, és alakja megegyezik egy jégdarab vagy egy kémcső körvonalával. A hővizsgálatot a következőképpen végezzük. Az alkar elülső felületének bőrére 40-42°-ra melegített vizet tartalmazó kémcsövet helyezünk 10 percre. A pozitív tesztre jellemző, hogy az érintkezés helyén urticariás hólyag képződik. K. p. fizikai allergiák esetén nem azonosítanak egy specifikus allergént, hanem csak lehetővé teszik annak megállapítását, hogy a páciens fokozott érzékenységgel rendelkezik-e a hőmérsékleti tényezővel szemben.

Bőrteszt értékelése

A K. tételek (táblázat) értékelésénél figyelembe kell venni, hogy sajátosságuk nem abszolút. Egyes esetekben pozitívak lehetnek, de nem kapcsolódnak a betegség etiológiájához. Az ilyen reakciókat fals pozitívnak nevezik. A hamis pozitív reakciók okai a következők lehetnek: 1. A bőr kapillárisainak fokozott érzékenysége a mechanikai irritációra. Ebben az esetben minden minta, beleértve a teszt-kontrollfolyadékot tartalmazó mintát is, hólyagos duzzanatot okoz, és nem számítható pozitívnak. Néha ez a reakció antihisztaminok felírásával enyhíthető. 2. Tompa vagy túl vastag tűk használata, vagy túl mély hegesítés. 3. Az allergén nem specifikus irritáló hatása a nem megfelelő előkészítés miatt (az allergénnek izotóniásnak és semleges reakciójúnak kell lennie). 4. Túlzott mennyiségű allergén bejuttatása (intradermális vizsgálat során). 5. A műszerek (fecskendők, tűk) szennyeződése korábbi vizsgálatból visszamaradt allergénekkel vagy hisztaminoldattal. 6. Az allergének előállításához használt tartósítószerekkel szembeni túlérzékenység (mertiolát, fenol, glicerin). 7. Szoros immunol, bizonyos allergének közötti hasonlóság a közös antigéncsoportok jelenléte miatt.

Ha az anamnézis egyértelmű utalásokat tartalmaz az etiolra, egy bizonyos allergén jelentőségére, és a K. p. negatív eredményt ad, akkor az ilyen válaszokat fals negatívnak nevezzük. A hamis negatív reakciók okai a következők lehetnek: 1) a kivonatok allergén tulajdonságainak elvesztése a hosszú távú és nem megfelelő tárolás vagy a gyártási folyamat során (az élelmiszer-allergén különösen gyorsan inaktiválódik); 2) a beteg érzékenységének hiánya vagy csökkenése, amelyet az alábbiak okoznak: a) az antitestek kimerülése a betegség súlyos súlyosbodása során vagy azt követően, b) a bőrérzékenyítő antitestek hiánya bizonyos típusú allergiák, például ételallergiák esetén. lásd), c) csökkent bőrreaktivitás keringési zavarokkal, ödémával, kiszáradással, ultraibolya sugárzás hatására, általános cachexiával és öregséggel, d) a páciens röviddel a vizsgálat előtt antihisztaminokat, adrenalint és efedrint kapott.

Asztal. A BŐRREAKCIÓ INTENZITÁSA EGYES BŐRTESZTELÉSI TECHNIKÁK ALATT (A táblázat színes rajzokkal illusztrált)

Bibliográfia: Adrianova N.V. és Titova S.M. Allergológiai rendelő, p. 11, M., 1970; Allergiás betegségek gyermekeknél, szerk. M. Ya Studenikin és T. S. Sokolova, p. 78, M., 1971; Modern gyakorlati allergológia, szerk. A. D. Ado és A. A. Polner, p. 23, M., 1963; Sherman W. W.

Túlérzékenység, mechanizmusok és kezelés, p. 141, Philadelphia a. o., 1968.